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バキュロウイルス-昆虫細胞酵素発現システム

バキュロウイルス–昆虫細胞発現系は、過去30年にわたり高発現の組換えタンパク質製造プラットフォームとして最も広く採用されている技術の一つとなっています。Creative Enzymesは、最適化したバキュロウイルスベクターおよび改変昆虫細胞株を用い、酵素の発現から製造までを包括的に支援するサービスを提供しています。本システムは、細胞質酵素、膜結合タンパク質、ならびに複雑な翻訳後修飾を要する酵素に特に適しています。強力なポリヘドリンプロモーター駆動の発現、適切な真核生物型フォールディング、ならびに本質的なバイオセーフティ上の優位性により、バキュロウイルス–昆虫細胞は生物学的活性を有する酵素の効率的な製造を可能にします。ベクターデザイン、ウイルスエンジニアリング、スケールアップ可能な細胞培養に関する当社の専門性により、信頼性・再現性・高収率の酵素製造を実現します。

背景:組換え酵素製造におけるバキュロウイルス–昆虫細胞発現系

過去30年間で、バキュロウイルス–昆虫細胞発現系は組換えタンパク質製造の中核技術へと発展してきました。もともとはウイルス学研究のために開発された本プラットフォームは、細菌や酵母系では製造が困難な酵素を含む複雑な真核生物タンパク質の発現に有用な強力ツールとして成熟しています。

本システムは組換えバキュロウイルスに基づき、最も一般的にはAutographa californica multiple nucleopolyhedrovirus(AcMNPV)由来のウイルスが用いられます。これらは昆虫細胞に感染しますが、脊椎動物や植物では複製しません。広く使用される昆虫細胞株にはSf9、Sf21、High Five細胞などがあります。感染時、通常は封入体(occlusion body)形成に関与するウイルスのポリヘドリン遺伝子が、強力なポリヘドリンプロモーター制御下の外来遺伝子に置換されます。その結果、ウイルス構造タンパク質の代わりに高レベルの組換えタンパク質が発現します。

Baculovirus insect cell expression system図1:バキュロウイルス–昆虫細胞発現系。野生型ウイルスに感染した細胞では、多量のポリヘドラおよびp10が形成されます。組換えウイルスの多くでは、ポリヘドリンおよび/またはp10プロモーターを用いて外来遺伝子の発現を駆動し、その結果、ポリヘドラ陰性表現型を示す組換え体となります。ポリヘドリンの代わりに、高レベルの組換えタンパク質が産生されます。

バキュロウイルス–昆虫細胞発現系の主な利点

  • 包括的な翻訳後修飾

バキュロウイルス–昆虫細胞系の主要な利点は、真正な真核生物型の翻訳後プロセシング能にあります。発現した酵素は、リン酸化、糖鎖付加、シグナルペプチド切断、アシル化(パルミトイル化およびミリストイル化を含む)、プレニル化、アミド化、ならびに適切なジスルフィド結合形成を受けることが可能です。

原核生物とは異なり、昆虫細胞は大型・多ドメイン・膜関連酵素の正しいフォールディングに必要なシャペロンおよび酸化的環境を提供します。糖鎖パターンは哺乳類系と若干異なるものの、得られるタンパク質はネイティブに近い構造と機能を保持します。このため、本プラットフォームは機能解析、構造生物学、ワクチン開発、詳細な酵素学的特性評価に用いる高品質酵素の製造に最適です。

  • ウイルスプロモーターによる高発現

目的遺伝子は強力なウイルス由来ポリヘドリンプロモーターの制御下に配置されます。本プロモーターにより、組換え酵素の発現量は細胞内総タンパク質の最大30%に達することがあります。

最適化した大規模培養戦略と組み合わせることで、バキュロウイルス–昆虫細胞系は、構造生物学、生化学的特性評価、機能アッセイ、ワクチン抗原製造、前臨床研究に適した量の組換え酵素を製造可能です。

  • 安全性および規制上の優位性

組換えベクターは、自然界で無脊椎動物に感染する一方、脊椎動物や植物には感染しないバキュロウイルスに由来します。この宿主特異性により、研究室および産業オペレーションにおける本質的なバイオセーフティが担保されます。

本システムの安全性プロファイルは、生物医学研究、ヒト用・動物用ワクチン製造、診断用抗原製造への適用を後押ししてきました。バキュロウイルス発現タンパク質に基づくサブユニットワクチンは、本技術の最も成功した応用例の一つです。

提供内容:バキュロウイルス–昆虫細胞を用いた包括的な酵素発現サービス

Creative Enzymesは、アカデミア、バイオテクノロジー、製薬、産業分野のお客様のニーズに合わせたエンドツーエンドのサービスを提供します。

サービス内容:

  • カスタムバキュロウイルスベクター構築
  • 昆虫細胞発現向けコドン最適化
  • 組換えウイルス作製および増幅
  • ウイルスタイター測定および品質評価
  • 小スケール発現スクリーニング
  • 大規模懸濁培養による製造
  • 酵素精製および活性解析
  • 試験成績書(CoA)を付した分析特性評価
  • 柔軟な製造スケール(研究用~パイロットスケール)

当社は、発現効率とタンパク質品質を最大化するため、ウイルスベクターシステムの高度化および改変昆虫細胞株の開発に継続的に投資しています。対応可能な対象は以下を含みます:

  • 細胞質酵素
  • 膜結合タンパク質
  • 多サブユニット酵素複合体
  • 複雑な翻訳後修飾を要する酵素

サービスワークフロー

Workflow of enzyme expression service using baculovirus–insect cell system

当社チームへのお問い合わせ

バキュロウイルス–昆虫細胞発現でCreative Enzymesが選ばれる理由

ウイルスベクターに関する専門性

バキュロウイルスエンジニアリングおよびプロモーター最適化における数十年の実績。

改変昆虫細胞株

タンパク質のフォールディングおよび分泌を強化する最適化細胞株へのアクセス。

高発現対応

強力なウイルスプロモーターにより、細胞内総タンパク質の最大30%の発現が可能。

信頼性の高い翻訳後プロセシング

正確なフォールディング、糖鎖付加、ジスルフィド結合形成。

柔軟な製造スケール

分析スケールの研究用製造から、より大きなパイロットバッチまで対応。

包括的な品質保証

各酵素バッチに詳細な分析レポートを添付し、一貫性と信頼性を担保。

事例:バキュロウイルス–昆虫細胞による酵素発現の成功例

事例1:バキュロウイルス–昆虫細胞系を用いた活性型/不活性型ERK2の高収率製造

がん関連シグナル伝達経路に関与する主要なセリン/スレオニンキナーゼである細胞外シグナル制御キナーゼ2(ERK2)を、バキュロウイルス–昆虫細胞発現系により不活性型および活性型の両形態で発現することに成功しました。不活性型ERK2は完全非リン酸化状態で精製され、均一性100%を達成し、細菌発現と比較して収率が20倍向上しました。活性型ERK2は、恒常的活性型MEK1とのin vivo共発現により作製され、T185およびY187における正しい二重リン酸化が得られました。両酵素形態はいずれも適切なキナーゼ活性を示し、ハイスループット生化学スクリーニングおよび構造ベース創薬への応用を可能にしました。

Expression, purification and characterization of inactive and active forms of ERK2 from insect expression system図2.昆虫発現由来の非リン酸化ERK2を精製するための、1段階陰イオン交換Q-HPによるAKTA FPLCクロマトグラフィー。ERK2は塩濃度勾配溶出において単一ピークとして溶出した。インタクト質量分析により、均一な非リン酸化状態であることが確認された。(Yan et al., 2015)

事例2:バキュロウイルス–昆虫細胞系を用いた糖鎖エンジニアリング酵素の製造

バキュロウイルス発現ベクターシステム(BEVS)をカイコに適用し、末端シアル化複合型N型糖鎖の生成に重要な組換えヒトβ-1,4-ガラクトシルトランスフェラーゼ1(β4GalT1)を製造しました。昆虫由来糖タンパク質は一般に哺乳類の糖鎖パターンと異なりますが、本研究では、適切なN型糖鎖付加を有し、ムチン型修飾を伴わないN末端またはC末端タグ付きrhβ4GalT1の大規模製造が可能となりました。特筆すべき点として、カイコ血清から精製した酵素は、哺乳類細胞発現体よりも高いガラクトシルトランスフェラーゼ活性を示しました。カイコ由来基質を用いて、機能的なUDP-ガラクトース転移活性が確認されました。本プラットフォームは、in vitroでの糖鎖成熟を支える糖転移酵素の費用対効果の高い製造、および高品質な組換え糖タンパク質製造におけるカイコ–BEVSの可能性を示しています。

Expression and characterization of human β-1, 4-galactosyltransferase 1 (Β4galt1) using silkworm–baculovirus expression system図3.rhβ4GalT1のガラクトシルトランスフェラーゼ活性アッセイ。(a)哺乳類細胞株で製造された市販rhβ4GalT1、ならびにカイコ幼虫由来のCタグ付きおよびNタグ付きrhβ4GalT1の比活性をGlycosyltransferase Activity Kitで測定した。(b)後部絹糸腺抽出液を、ドナーとしてUDP-ガラクトース(UDP-Gal)およびrhβ4GalT1(NタグまたはCタグ)の有無(+/-)で、37℃で1時間インキュベートした。Mock:後部絹糸腺抽出液の代わりにアッセイバッファーを使用。(Morokuma et al., 2017)

よくあるご質問(FAQ)

  • Q:細菌発現系ではなく、バキュロウイルス–昆虫細胞を選択すべきなのはどのような場合ですか?

    A:酵素が真核生物型フォールディング、ジスルフィド結合、糖鎖付加、膜局在、または細菌宿主では再現できないその他の翻訳後修飾を必要とする場合に最適です。
  • Q:昆虫細胞で発現したタンパク質はワクチン開発に適していますか?

    A:はい。バキュロウイルス–昆虫細胞は、安全性と抗原性を有するタンパク質を産生できることから、サブユニットワクチン製造に広く使用されています。
  • Q:どの程度の製造スケールに対応できますか?

    A:プロジェクト要件に応じて、mgスケールの研究用バッチからgスケールのパイロット製造まで対応可能です。
  • Q:膜タンパク質の発現は可能ですか?

    A:はい。本システムは膜結合酵素および多回膜貫通タンパク質の発現に特に適しています。
  • Q:本システムは安全ですか?

    A:バキュロウイルスは無脊椎動物のみに感染し、脊椎動物細胞や植物細胞では複製しないため、バイオセーフティが確保されます。
  • Q:精製サービスも提供していますか?

    A:はい。ご要望に応じて、精製、活性試験、安定性解析に対応します。
  • Q:分析レポートは含まれますか?

    A:すべての酵素バッチは、試験成績書(CoA)および詳細な品質関連文書を添付して納品します。

参考文献:

  1. Morokuma D, Xu J, Hino M, et al. Expression and characterization of human β-1, 4-galactosyltransferase 1 (β4galt1) using silkworm–baculovirus expression system. Mol Biotechnol. 2017;59(4-5):151-158. doi:10.1007/s12033-017-0003-1
  2. Yan K, Merritt H, Crawford K, et al. Expression, purification and characterization of inactive and active forms of ERK2 from insect expression system. Protein Expression and Purification. 2015;110:172-179. doi:10.1016/j.pep.2015.03.010

研究および産業用途にのみご使用ください。個人医療用途には適していません。一部の食品グレード製品は、食品および関連用途における処方開発に適しています。

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